Инфекционная болезнь овец, коз, лошадей, свиней и крупного рогатого скота, протекающая преимущественно хронически, характеризуется образованием в лимфоузлах и паренхиматозных органах казеозных очагов. Восприимчив так же и человек.
Этиология. Возбудитель – Corynebacterium pseudotuberculosis (ovis). Имеет гантеле - или булавовидную форму.
Эпизоотологические данные. Наиболее восприимчивы мериносы, болеют взрослые животные старше 2-3 лет. Заболеваемость – 40-60 на 100 животных. Очень мала заболеваемость у молодняка. Источник инфекции – больные, переболевшие животные и носители. Возбудитель выделяется с содержимым вскрывшихся абсцессов, с фекалиями, молоком. Факторы передачи – корма, подстилка, молоко, стригальный инструмент, хирургический инструмент, противопаразитарный купочный раствор. Заражение, в основном, происходит через повреждённую кожу и слизистые оболочки в период окота, при хирургических вмешательствах, стрижке, противопаразитарном купании. Сезонность – весенне-летняя, пик – июль-август, через 1-2 месяца после стрижки и противопаразитарного купания. Интенсивность эпизоотического процесса – спорадии, эпизоотии.
Клинические признаки. Инкубационный период – 1-2 недели. Обычно хроническое течение, продолжается месяцами и годами. Наблюдаются лимфаденитная и висцеральная формы болезни. Нередко бывает латентное течение. Лихорадка, лимфоцитоз, базофилия, эритропения. Клинические признаки определяются локализацией абсцессов. Чаще абсцессы расположены в предлопаточных лимфоузлах (92 %), лимфоузлах коленной складки (5,5 %), подкожно, в молочной железе, почках, сердце. Наблюдаются эпидидимиты и орхиты. Из внутренних органов чаще поражаются лёгкие, реже печень.
Патологоанатомические признаки. Казеозные очаги (смотрите клиническое проявление). Содержимое абсцессов имеет сметанообразную консистенцию зеленоватого цвета без запаха, впоследствии сметанообразная масса превращается в творожистую (казеозную).
Лабораторные исследования. Патматериал – невскрывшиеся свежие инкапсулированные очаги. Бактериоскопия – мазки-отпечатки окрашивают по Граму, получают грамположительные кокки, овоиды, палочки, чаще собранные кучками. Культивируют на специальных питательных средах – средах с добавлением Теллурита калия: среде Клауберга, среде Германа, кровяном теллуритовом агаре. Колонии окрашиваются в чёрный цвет за счёт восстановления металлического теллура. Различают R-, I-, S-формы колоний. Исследование токсигенных свойств: посев на кровяной агар, на который по диаметру посеян гемолитический Staphylococcus albus. Показатель токсигенности – подавление бета-гемолизина стафилококка. Гистологическое исследование – гранулёма характерного строения. Биопроба – заражают внутримышечно самцов морских свинок, на 5-20 день у них развивается орхит.
Аллергическая диагностика. Используют аллерген Прейсцнокардин Е, вводят 0,2 мл внутрикожно в подхвостовую складку. Оценивают через 24 часа, положительный результат – утолщение подхвостовой складки на 2-3 мм и более.
Профилактика и меры борьбы. Клиническое исследование 1 раз в год через 1,5-2 месяца после стрижки, в неблагополучных хозяйствах – клинико-аллергическое исследование 4 раза в год в течение 2 лет до получения отрицательного результата. Первое клиническое исследование – после окота, второе – через 1,5-2 месяца после стрижки. Животных с клиническими признаками, выявленными при первом и втором исследовании, отправляют на мясокомбинат. Трупы помещают в биотермическую яму или перерабатывают на мясокостную муку. Для дезинфекции надо применять растворы: 4 % раствор едкого натра, 2 % раствор формальдегида, 2 % раствор глутарового альдегида. Для проверки качества дезинфекции надо использовать стафилококк штамм Р-209. На неблагополучное хозяйство накладывают ограничения на срок 2 года.
Трофимов Игорь Георгиевич.